為什麼使用對數生長期的大腸桿菌odm不超過0 4

1樓：網友

如果使用調整期的細胞，細胞數量太少，不合適。

如果使用平臺期的細胞棗物，這個時候細胞內開始表達次級代謝產物了，細胞和細胞之間形態的特徵也很不一樣頃伏，做出來的細胞雖然數量多，但是感受態效率低。

如果使用衰亡期的細胞，都是細胞碎雀巖攜片和死細胞，沒法兒用。

對數期細胞此時形態間差異性不大，細胞也健康，數量也不少。

綜上所述，用對數期做。

2樓：網友

為什麼使用對數生長期的大腸杆灶野汪菌odm不超過？：

因為他脊手們的統隱仔計以及內容計劃，不是先規劃好，然後進行模式切換式，這樣也能更好的規整計劃。

大腸桿菌感受態細胞的製備實驗中a600為什麼在0.4到0.5之間

3樓：匡雅霜

你是用37℃搖菌的吧。

在這個溫度下，od=左右，是大腸桿菌剛進入對數期，這個時候的大腸桿菌菌體狀態穩定，用來製作感受態，效率會比較高。

您好，請問您做微生物實驗時，培養到對數生長期的菌體的od 600是在大概多少的數值範圍？

4樓：網友

od600能檢測出的時候已經是10^6到10^7 cfu/ml了。od600最高值時，一般10^9 cfu/ml。

od的檢測範圍很窄。

5樓：食品安全保健及基因

之間，一般在的時候新增誘導劑，這個是針對大腸桿菌的，不同菌不一樣。

大腸桿菌感受態製備過程中od值高於0.6會有什麼影響，為什麼？？

6樓：匡雅霜

這個要看你是用多高的溫度來搖菌的了。

如果你用的是37℃搖的話，那麼這個od有點老了，這樣做出來的感受態轉化效率會低些，但是隻是轉質粒的話還是沒問題的。

7樓：大魚小心

這是乙個經驗值，時大腸桿菌處於對數期，對數期的細胞穩定用於科研優勢多，過了細菌有點」老「了，有害代謝物也開始積累。

進行病原獨立測定時，為什麼要使用對數生長期的細菌培養物？

8樓：網友

在這個時期，細菌的生長狀態，制病性，感染強度，傳染力，都是最佳的狀態，是最適合研究的時期。

求助大腸桿菌感受態細胞問題

9樓：網友

（1）質粒dna的質量和濃度：用於轉化的質粒dna應主要是超螺旋態的，轉化率與外源dna的濃度在一定範圍內成正比，但當加入的外源dna的量過多或體積過大時，則會使轉化率下降。一般地，dna溶液的體積不應超過感受態細胞體積的5%，1ng的cccdna即可使50ul的感受態細胞達到飽和。

對於以質粒為載體的重組分子而言，分子量大的轉化效率低，實驗證明，大於30kb的重組質粒將很難進行轉化。此外，重組dna分子的構型與轉化效率也密切相關，環狀重組質粒的轉化率較分子量相同的線性重組質粒高10~100倍，因此重組dna大都構成環狀雙螺旋分子。（2）感受態細胞的質量：

所用的cacl2等試劑均需是最高純度的，並用最純淨的水配製，最好分裝儲存於4℃ （3）細胞的生長狀態和密度最好從-70℃或-20℃甘油儲存的菌種中直接轉接用於製備感受態細胞的菌液。不要用已經過多次轉接，及貯存在4℃的培養菌液。細胞生長密度以每毫公升培養液中的細胞數在5×107個左右為佳。

即應用對數期或對數生長前期的細菌，可通過測定培養液的od600控制。對tg1菌株，od600為0．5時，細胞密度在5×107個/ml左右。（應注意od600值與細胞數之間的關係隨菌株的不同而不同）。

密度過高或不足均會使轉化率下降。（二）感受態細胞轉化中的影響：整個操作過程均應在無菌條件下進行，所用器皿，如離心管，移液槍頭等最好是新的，並經高壓滅菌處理。

所有的試劑都要滅菌，且注意防止被其它試劑、dna酶或雜dna所汙染，否則均會影響轉化效率或雜dna的轉入。整個操作均需在冰上進行，不能離開冰浴，否則細胞轉化率將會降低。